Déchiffrer la diversité à er loci pour diversifier la résistance à l'oïdium du pois

Rapports scientifiques volume 12, Numéro d'article : 16037 (2022) Citer cet article

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Une correction de l'auteur à cet article a été publiée le 06 décembre 2022

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La biotechnologie agricole vise à scruter les grandes cultures qui nourrissent la moitié de la population mondiale en améliorant leurs caractéristiques agronomiques à l'aide de divers outils biotechnologiques. Pois - une culture commerciale importante, riche en nutriments, mais fréquemment infectée par l'oïdium (maladie fongique causée par Erysiphe pisi) qui détruit toute la culture et entraîne des pertes économiques pour les producteurs. Nous avons donc ciblé cette recherche pour trouver les lignées de pois résistantes aux agents pathogènes et déchiffrer davantage la diversité au niveau du locus parmi les lignées de pois résistantes. Le dépistage des lignées de pois résistantes a été effectué avec des isolats d'Erysiphe pisi (soumission Genebank : KX455922.1) dans des conditions de moustiquaire et de serre. Des études moléculaires ont révélé que le gène résistant à l'Erysiphe (er1) était présent dans 40 lignées sur les 50 lignées de pois sélectionnées et le caractère mutationnel a été conféré jusqu'à 36 génotypes avec 11 groupes d'haplotypes. La diversité des haplotypes (gènes) (Hd) s'est avérée être de 0,5571 ± 0,099 SD et la diversité des nucléotides (Pi) était de 0,0160 ± 0,0042 SD La majorité des lignées résistantes (67 %) se sont produites dans Hap-1, les autres haplotypes restants (Hap 2– 10) ayant 33 % de lignées résistantes, chacune présentant des substitutions nucléotidiques caractéristiques par rapport au gène PsMLO1 de référence ; les génotypes de ces haplotypes divergents peuvent être utilisés dans la sélection pour la résistance des pois afin d'éviter l'homogénéité génétique et la vulnérabilité génétique.

En cette ère de pandémie mondiale, nous sommes en mesure de préciser que les installations médicales deviennent la priorité pour sauver la vie de toute la communauté. Bien qu'il s'agisse d'un discours universel, pour nourrir toute la communauté, l'agriculture joue un rôle égal et important dans le bien-être et les moyens de subsistance des populations dans le monde. En remontant dans l'histoire jusqu'à cette situation pandémique, nous pouvons élaborer sur le rôle de diverses cultures agricoles et horticoles pour renforcer l'immunité contre diverses maladies, par exemple le curcuma, l'ajwain, le gingembre, l'ail, parmi les légumes le brocoli (anticancéreux), le citron (vit c), et tous les légumes à feuilles vertes (riches en fer). Les cultures ne sont pas seulement connues pour leur valeur nutritive ; mais aussi apporter de l'économie aux agriculteurs. Ces cultures sont cultivées dans le monde entier selon leurs conditions géographiques et climatiques. Si nous commençons notre voyage depuis le nord-ouest de l'Himalaya, nous prêtons attention à la culture du pois (Pisum sativum) qui est cultivée depuis de nombreux siècles pour les gousses vertes et les céréales afin de répondre aux besoins nutritionnels et à l'amélioration économique des producteurs. Sur le plan nutritionnel, la récolte de pois comprend des protéines (25%), de l'amidon à digestion lente (50%), des sucres (12%), des acides aminés, des glucides, des vitamines (A et C), du calcium et du phosphore1 ainsi que de la lysine2. Caractéristique intéressante de cette culture qui augmente sa valeur en tant que culture légumière, elle peut être mise en conserve, congelée, déshydratée ou séchée et devient ainsi une légumineuse. Étant monumentales, plusieurs mesures préventives ont été prises pour la protection des cultures dues aux stress biotiques et abiotiques. L'oïdium du pois est l'un des stress biotiques courants, qui est causé par l'Erysiphe pisi DC ex. Saint-Amans réduit le rendement des cultures jusqu'à 50 % en affectant la qualité et la quantité de gousses vertes et de graines sèches de pois3,4. La gestion de cette maladie drastique devient une contrainte car l'agent pathogène a non seulement affecté le grain et les gousses, mais a également réduit le feuillage des pois jusqu'à 33–69 %5. Banyal et al.6 ont développé des cultivars résistants aux maladies en étudiant la variabilité pathogène d'E. pisi parmi diverses variétés de pois. Ces lignées résistantes possèdent le locus er (Erysiphe resistant) possédant le gène MLO (responsable du mécanisme de résistance chez le pois) qui a été détecté par différentes approches moléculaires. La présente enquête a donc été menée pour trouver la présence du gène MLO parmi des cultivars résistants sélectionnés de pois et déchiffrer la diversité du gène er présent parmi ces cultivars résistants.

Les caractéristiques morphologiques, à savoir les hyphes, les conidies, les conidiophores, la taille des conidies et les cellules du pied des conidiophores, ont été étudiées sur les feuilles détachées de l'hôte à l'aide d'un microscope à zoom stéréo (Fig. 1; Tableau 1). Attanayake et al.7 ont décrit deux groupes d'agents pathogènes du pois infectés par l'oïdium dans une combinaison de caractéristiques morphologiques et moléculaires. L'amplification par PCR a révélé un amplicon d'environ ~ 560 pb (Fig. 2) qui a ensuite été purifié sur gel et lyophilisé avant le séquençage. L'analyse BLAST des séquences des isolats de test P-1 (du pois) et P-2 (du trèfle) a indiqué que les deux souches ont été placées dans la lignée phylogénétique occupée par le genre Erysiphe avec les espèces, pisi et trifolii, respectivement (Fig. 2) (https://v3.boldsystems.org/index.php/IDS_BlastRequest). La souche de séquence d'ARNr 18S a été déposée dans la NCBI GeneBank (numéros d'accès KX455922 et KX455923, respectivement).

Les cléistothèces d'Erysiphe pisi responsables de l'oïdium du pois se forment lors de la reproduction sexuée, se présentent sous la forme de sphériques, grégaires, de couleur brun foncé, mesurant environ 87,5 à 133 µm de diamètre et dispersées dans la toile mycélienne.

Région d'ADNr amplifiée à l'aide d'amorces spécifiques d'Erysiphe-EryF(5'-TACAGAGTGCGAGGCTCAGTCG-3') EryR (5'-GGTCAACCTGGTGATCCATGTGACTGG-3') (M : échelle de 1 Kb ; isolats fongiques (P1-P24 UPPER) P-1 et P-2 ainsi que la phylogénie des arbres de P-1 : Erysiphe pisi, P-2 : Erysiphe trifolii (INFÉRIEUR).

Auparavant, un dépistage a été effectué et 3 lignées résistantes sélectionnées ont été croisées avec JI-2302 (er1) et JI-2480 (er2) en 8 combinaisons croisées, à savoir JI-2480 × Acacia, JI-2480 × PMR-10, JI- 2480 × EC-381866–1, JI-2480 × Lincoln, JI-2302 × Acacia, JI-2302 × PMR-10, JI-2302 × EC-381866–1 et JI-2302 × Lincoln sous moustiquaire et serre et description de l'infection ont été observées6. La résistance était gouvernée chez les cultivars maximum en raison de la présence du gène er1 (tableau 2). Nous sélectionnons donc le gène er1 pour des études ultérieures.

Un total de 50 lignées de pois ont été utilisées pour l'extraction d'ARN (Fig. 3). L'ADNc préparé à partir d'ARN a été encore amplifié par des amorces spécifiques mentionnées dans le matériel et les méthodes. Pour y parvenir, des PCR répétées plusieurs fois ont été réalisées dans tous les échantillons afin de standardiser le protocole. Sur 50 lignées, l'amplification a été possible avec les amorces 3F et 3R qui ont produit 40 amplicons de taille variable (300–325 pb) ciblant que le gène er1 n'était présent que dans ces lignées. (Tableau 3 ; Fig. 3).

Amplification de fragments d'ADN (1–40) de lignées de pois sélectionnées. L'amplification a été possible avec l'amorce Primer PsMLO3F et PsMLO3R ont produit 40 amplicons de taille variable (300–325 pb) dans différents génotypes utilisés. L = Échelle (100 pb).

BLAST N recherche de l'homologie de toutes les séquences du gène er1 correspond au gène présent dans l'ARNm de Pisum sativum MLO1 (MLO1), cds complet ; l'homologie demande des valeurs ≥ 90 % et des valeurs E proches de 0 pour l'analyse Nucleotide Blast. Les analyses phylogénétiques ont séparé les accessions de pois en 3 groupes. Le grand groupe A constituait 32 accessions et les 8 accessions restantes étaient regroupées en 6 et 2 dans les groupes B et C, respectivement. L'arbre obtenu a ensuite été enregistré au format Newick et le programme Fig Tree a été utilisé pour l'illustration de l'arbre (Fig. 4) (http://tree.bio.ed.ac.uk/software/figtree/).

Arbre NJ basé sur des séquences MLO. Les probabilités postérieures des principaux clades supérieures à 0,93 (a) et les valeurs bootstrap en % (b) sont indiquées aux nœuds (100). La désignation comprend le numéro et le nom des lignées de pois.

Un total de 11 haplotypes ont été obtenus et la fréquence des haplotypes variait de 1 à 24. Hap-1 était l'haplotype le plus abondant représentant 24 génotypes dont le génotype de référence (FJ463618.1). Les haplotypes restants étaient représentés par un seul génotype à l'exception de Hap-4 qui est représenté par 3 génotypes (tableau 4). Le Hap-1 ayant 23 génotypes a montré une similitude de 100 % avec le génotype de référence (FJ463618.1), et n'a donc aucune substitution de base par rapport à PsMLO1, alors que Hap-2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9 , 10 et 11 ont respectivement 9, 5, 1, 6, 6, 16, 15, 14, 13 et 6 substitutions de base.

L'analyse des sites polymorphes a été réalisée à l'aide de DNAsp VI et un total de 36 séquences ont été utilisées avec un total de 198 sites variables. Les 47 sites polymorphes comprenaient 18 sites variables Singleton, dont 17 avec deux variantes et un avec trois variantes. Il y avait 29 sites informatifs Parsimony dont 26 avec deux variantes et trois avec trois variantes. L'analyse des sites polymorphes a été étudiée plus en détail en utilisant l'alignement de séquences multiples. L'alignement de séquences multiples a été réalisé dans MEGA-(logiciel) à l'aide de l'outil Clustal W8. Chaque haplotype de génotypes de pois résistants évalués a été comparé au génotype de référence pour n'importe quel site avec remplacement, suppression et ajout (Fig. 5).

Alignement de séquence du gène MLO (906–1229 pb) d'accessions de pois résistantes à l'oïdium appartenant à l'haplotype 1–11 avec la séquence de référence FJ463618.1.

La diversité des haplotypes a été calculée à l'aide de DNAsp VI où la diversité des haplotypes (gènes) était de 0, 5571 et la diversité des nucléotides (par site) de 0, 01606 (tableau 5). Le test de Tajima s'est également avéré statistiquement significatif avec le D-2.09021 de Tajima à P < 0,05. Un réseau de jonction médiane déduit de 40 ensembles de séquences avec 33 non. d'haplotypes actifs a été tiré. Une valeur de zéro a été définie pour epsilon (e = 0) pour calculer les réseaux clairsemés rapidement ou de manière incrémentielle. Le maximum non. des mutations (29) a été trouvé au caractère 941 et le moins non. des mutations (1) variaient entre les caractères 992 et 1190 (Fig. 6).

Réseau de jonction médian avec vecteur médian (points de couleur rouge), caractères mutés (taxons de couleur rouge) et fréquence de séquence (points de couleur jaune).

Les légumineuses sont les principales cultures produites après les céréales et le pois des champs (Pisum sativum) est l'une des cultures les plus largement cultivées9. À ce jour, diverses études de recherche ont été menées pour la gestion de l'oïdium chez les plants de pois10,11,12. Pour une gestion à long terme et une augmentation de la production, il est nécessaire de développer des plantes cultivées génétiquement résistantes13. De plus, la connaissance des ressources génétiques et des caractères contribuant au rendement est nécessaire pour comprendre la diversité génétique14. Connaissant l'importance de cette culture légumière en explorant la littérature, nous avons donc poursuivi notre enquête en déterminant la diversité des lignées de pois résistantes aux agents pathogènes à er loci15, qui ont été criblées in vitro16. La collecte et le profilage ADN de l'oïdium causant l'agent pathogène du pois17,18 correspondent au genre Erysiphe avec les espèces pisi et trifoli, respectivement7,19,20. La région du nord-ouest de l'Himalaya est le point chaud le plus répandu de l'oïdium16. Le stade sexué d'un agent pathogène (cléistothèces) se forme fréquemment uniquement dans la zone tempérée sèche21 indiquant la présence de la virulence pathogène d'E. pisi dans la zone IV de l'Himalaya. L'étude de la variabilité pathogénique d'E. pisi est la plus importante pour la sélection de variétés résistantes. Les variétés résistantes ont évolué contre l'oïdium du pois et deviennent sensibles après un court laps de temps, indiquant l'existence et la sélection pour l'émergence d'une nouvelle virulence d'E. pisi. L'étude de la variabilité pathogénique a donc été nécessaire pour la gestion réussie de la maladie par l'identification, le développement et le déploiement de sources/variétés de résistance dans une situation géographique donnée6,22. Cela pourrait nous être utile dans une plus grande mesure en ce qui concerne la sélection ainsi que les aspects de conservation du programme d'amélioration des cultures de pois. Les résultats expérimentaux ont révélé que les cultivars sélectionnés (ayant le gène résistant à l'Erysiphe pisi) croisés avec des porteurs (JI-2302, JI-2480 (er1 et er2) se sont avérés régis par la résistance par un seul gène er1 de la lignée porteuse résistante JI-2302 (er1)12,23,24,25,26. Les gènes er1 et er 2 peuvent être considérés comme des bases naturelles majeures de résistance10,27,28,29 contre l'agent pathogène de l'oïdium, donc introgressé dans les lignées de pois suivantes. Bien que le gène er2 qui a également conféré résistance, les cultivars de pois maximaux ont révélé la présence du gène er1 conférant une résistance à l'oïdium12,25,26 Le gène er1 obtenu dans les lignées de pois résistantes a en outre été assuré par une approche moléculaire30,31,32,33 Les découvertes passées nous ont apporté la connaissance de la mutagenèse aléatoire naturelle au Mildew Locus O (MLO) chez de nombreux monocotylédones/dicotylédones34 qui a conduit à des mutations naturelles de perte de fonction Les rapports suggèrent que cette mutation devient bénéfique pour l'hôte pour mettre fin à l'invasion fongique à la première étape, créant ainsi une résistance . Dans le cas de Pisum sativum, le gène PsMLO1 présent dans la culture offre une résistance large et durable contre l'agent pathogène de l'oïdium35, agissant ainsi comme un gène candidat pour révéler la diversité allélique parmi les lignées de pois résistantes. L'amplification avec des amorces (PsMLO3FP et PsMLO3R) a révélé que les candidats peuvent être identifiés au cours des premiers stades de l'infection à E. pisi36. Dans le cas de la tomate37, de l'orge38, du poivre39 et de la vigne40,41, l'expression des gènes résistants a augmenté en réponse à l'agent pathogène dans les premières 24 h et un pic de résistance a été obtenu vers 6 h. De même, après infection par E. pisi, la résistance s'est développée dans les lignées de pois après 4 à 8 jours, ce qui a été observé morphologiquement, et des taux de résistance et de sensibilité ont été enregistrés42. Au cours de l'analyse phylogénétique, nous avons trouvé que la plupart des séquences du gène er1 correspondaient au gène de référence (Pisum sativum MLO1) dont le plus grand clade comprend le groupe majeur A correspond à ≥ 90% de similarité avec les séquences Pisum sativum MLO143,44. Les résultats se sont avérés en harmonie avec les résultats obtenus par de nombreux collaborateurs35,37. L'accession de lignées de pois dans un clade majeur du groupe A (Fig. 4) possédant les séquences MLO1 (analogue du gène er-1) pourra ainsi être directement utilisée dans les futurs programmes de sélection. Selon le NIH (National Human Genome Research), les haplotypes sont des combinaisons alléliques (simples/multiples) où le polymorphisme se trouve très proche entre les gènes ainsi hérités ensemble sans aucune recombinaison, utilisés par la suite dans des études génétiques. L'approche basée sur les haplotypes utilisée pour l'identification de la diversité génétique dans les cultivars de blé panifiable (Triticum aestivum) a été largement utilisée par de nombreux scientifiques45 et est ainsi devenue une technique utile dans les programmes d'amélioration des cultures. Nous avons trouvé un total de 11 groupes d'haplotypes où la fréquence des haplotypes variait de 1 à 24. Parmi ces groupes, Hap-1 était l'haplotype le plus abondant, représentant 23 génotypes, dont le génotype de référence (FJ463618.1), qui n'a révélé aucune base substitution par rapport à PsMLO1. Les génotypes ayant le gène er1 regroupé dans Hap-1 représentent les allèles résistants passés de porteurs résistants liés entre eux sans aucune substitution. Dans le cas de Hap-2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10 et 11, nous avons trouvé des substitutions de base de 9, 5, 1, 6, 6, 16, 15, 14, 13 et 6 , respectivement au locus MLO, montrant la diversité des substitutions du gène er1 (Fig. 5). Chaque haplotype de génotypes de pois résistants évalués a été comparé au génotype de référence pour n'importe quel site avec remplacement, suppression et ajout. Les génotypes de ces haplotypes divergents peuvent être utilisés dans la sélection pour la résistance des pois afin d'éviter l'homogénéité génétique et la vulnérabilité génétique. Dans le cas de la culture fruitière, des cultivars divergents peuvent être utilisés pour la domestication des cultivars à maturation précoce et tardive dans le litchi46. Les calculs statistiques ont révélé une diversité d'haplotypes de 0,5571 ± 0,099 SD et une diversité de nucléotides (Pi) de 0,0160 ± 0,0042 SD. Une faible valeur de nd (0,01606) et une valeur négative du D -2,09021 de Tajima à P < 0,05 (statistiquement significatif) ont révélé que ces lignées résistantes ne peuvent pas être affectées par les conditions environnementales. La diversité nucléotidique (nd) des variétés cultivées des accessions de riz coréen (mauvaise herbe = 0,0102, variété locale = 0,0093 et cultivée = 0,0066) s'est avérée plus faible, n'a révélé aucune réduction de la diversité au cours de la domestication47. Pour illustrer les données moléculaires pour les études intraspécifiques, divers réseaux d'haplotypes étaient auparavant utilisés 48. En termes simples, ces réseaux donnent un aperçu de la structure de la population, de la migration et de la création de nouvelles espèces49. Ici, nous dessinons un réseau de jonction médiane (MJN) d'haplotypes avec des caractères mutés (Fig. 6). La littérature a soutenu que la méthode MJ nécessitait le moins non. de mutations, ce qui a donné une bonne généalogie50. De plus, cette approche MJ fonctionnait correctement lorsque les haplotypes étaient relativement éloignés51 et affichait une bonne construction de réseau avec de faibles taux de substitution52. Kong et al.53 ont discuté de l'utilisation des réseaux de jonction médiane dans le domaine de la biologie évolutive. Notre réseau MJN a révélé la présence du gène er1 dans la grande majorité des lignées partageant un haplotype identique avec le gène de référence PSMLO1, suggérant ainsi que ces lignées sont issues d'un ancêtre commun.

Tous les matériaux collectés et la méthodologie conçue pour la recherche étaient conformes aux directives et réglementations en vigueur.

Un total de 24 isolats d'oïdium causant des agents pathogènes ont été collectés dans le nord-ouest de l'Himalaya, dont un maximum d'isolats ont été collectés dans 15 endroits différents de la région trans-himalayenne de Lahul Spiti. Ceux-ci ont été purifiés et maintenus dans une serre pour des études ultérieures. L'agent pathogène responsable de l'oïdium du pois a été identifié sur la base de caractéristiques morphologiques, à savoir les hyphes, les conidies, les conidiophores, la taille des conidies et les cellules du pied des conidiophores. En outre, une analyse polyphasique de la souche a été effectuée dans la région de l'espaceur transcrit interne (ITS) de l'ADN ribosomique nucléaire (ADNr). La séquence obtenue a été soumise à la banque de gènes NCBI pour le numéro d'accession.

Le dépistage de la résistance contre les agents pathogènes fongiques identifiés a été effectué à partir d'un panel de 310 lignées de pois comprenant du matériel génétique exotique et indigène collecté à partir de différentes sources (CSK HPKV Palampur, NBPGR New Delhi, PAU Ludhiana et IIPR Kanpur). feuilles détachées dans des conditions in vitro54. Les lignées résistantes identifiées ainsi que les lignées sensibles ont été croisées avec les gènes récessifs connus er1 et er2 présents dans les lignées JI-2302 (er1) et JI-2480 (er2) sous serre. En outre, des cultivars résistants aux gènes er respectifs ont été sélectionnés pour déterminer la diversité allélique au locus er.

Au total, 50 lignées de pois ont été sélectionnées pour l'isolement de l'ARN à l'aide de la méthode au trizol55. L'ARN a été extrait des feuilles fraîches (sans inoculation d'Erysiphe pisi) et des feuilles inoculées après 4 et 8 jours d'inoculation fongique (Erysiphe pisi).

40 ug d'ARN ont été utilisés pour l'amplification d'ADNc à l'aide d'un activateur de transcriptase inverse, d'un tampon d'ADNc 5 ×, d'un mélange de dNTP (5 mm chacun) et d'une enzyme verso conformément aux instructions recommandées sur le kit d'ADNc d'enzyme Verso. Le mélange réactionnel PCR a été incubé à 42 ° C pendant 30 min. De plus, la réaction a été terminée à 95°C pendant 2 min. Pour l'amplification de l'ADNc, les plaques PCR ont été remplies d'un mélange réactionnel contenant du tampon 5X, du MgCl2 25 mM, des dNTP 10 mM, 0, 5 mM de chaque amorce PsMLO spécifique (tableau 6), de l'ADN polymérase Taq 5U avec de l'ADNc matrice. Le profil d'amplification consistait en 1 cycle à 95 °C/5 min ; 37cycles à 95 °C/30 s, 50 °C/les 30 s et 72 °C/1 min 20 s ; 1 cycle à 72 °C/7 min ; maintenir à 4 °C/∞. Les produits de PCR ont été séparés sur gel d'agarose (1,2 %) et les amplicons ciblés ont été purifiés et séquencés au SciGenome Labs Private Ltd. Cochin, Kerala—INDE.

L'homologie des séquences de gènes a été analysée à l'aide d'outils bioinformatiques en ligne disponibles dans la base de données NCBI du programme FASTA. BLASTN a été utilisé pour la comparaison de séquences sur la base de données génomique NCBI (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/blast/Blast.cgi). L'analyse phylogénétique a été effectuée dans MEGA 5.056 et les paramètres génétiques tels que la diversité des haplotypes et le nombre total de mutations, le polymorphisme Indel ont été calculés à l'aide de la version 5.1057 de DnaSP. Network v 4.61 a été utilisé pour construire un réseau de jonction médiane (MJ)58 des haplotypes (http://www.fluxus-engineering.com).

Pour la gestion des maladies fongiques dans les cultures, de nombreuses stratégies comprenant des approches conventionnelles et non conventionnelles sont fréquemment utilisées. De nos recherches, nous avons identifié les cultivars résistants dans les cultures de pois qui répondent à la demande des agriculteurs faibles et marginaux et réduisent l'utilisation de produits chimiques de manière contrôlée.

Les ensembles de données analysés au cours de l'étude actuelle sont disponibles dans le référentiel NCBI Nucleotide, https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/1131300078, https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nuccore/1131300079 avec les numéros d'accès GenBank : KX455922.1 et GenBank : KX455923.1 respectivement.

Une correction à cet article a été publiée : https://doi.org/10.1038/s41598-022-25312-0

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Les auteurs sont reconnaissants à l'agence de financement SERB, Ministère de la Science et de la Technologie, Département de la Science et de la Technologie, New Delhi, pour avoir fourni une aide financière pendant toute la période d'achèvement de la recherche.

Département de pathologie végétale, COA, CSKHPKV, Palampur, HP, 176061, Inde

Devinder K. Banyal, Himisha Dixit, Anudeep B. Malannavar et Nisha Thakur

Dr YSPUHF, KVK, Chamba, HP, 17512, Inde

Jai Chaudhary

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Tous les auteurs ont effectué chaque étape de la recherche de manière égale sous la supervision de DKB (Professeur et chef, COA, Département de pathologie végétale, CSKHPKV, Palampur (HP). L'auteur correspondant a terminé la recherche et rédigé le manuscrit complet qui a été consulté par tous les auteurs. .

Correspondance avec Nisha Thakur.

Les auteurs ne déclarent aucun intérêt concurrent.

Springer Nature reste neutre en ce qui concerne les revendications juridictionnelles dans les cartes publiées et les affiliations institutionnelles.

La version originale en ligne de cet article a été révisée : dans la version originale de cet article, Himisha Dixit était incorrectement affilié au "Centre forComputational Biology and Bioinformatics, School of Life Sciences, Central University of Himachal Pradesh, TAB Shahpur, Kangra, HP, 176206 , Inde'. L'affiliation correcte est répertoriée ici. Département de pathologie végétale, COA, CSKHPKV, Palampur, HP, 176061, Inde.

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Réimpressions et autorisations

Banyal, DK, Dixit, H., Chaudhary, J. et al. Déchiffrer la diversité à er loci pour diversifier la résistance à l'oïdium du pois. Sci Rep 12, 16037 (2022). https://doi.org/10.1038/s41598-022-19894-y

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Reçu : 07 janvier 2022

Accepté : 06 septembre 2022

Publié: 26 septembre 2022

DOI : https://doi.org/10.1038/s41598-022-19894-y

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